Génotypage et expression

Le scanner iScan permet une large gamme d’applications pour des analyses génétiques, y compris :

• Génotypage : Génotypage Illumina grâce aux puces à ADN pour étude GWAS.
  Les applications du génotypage :
      1. SNP et analyse CNV
      2. Analyse de lien
      3. Génotypage ciblé
• Analyse d’Expression de gènes : les puces de gene expression fournissent une vue globale de l’activité des gènes dans les cellules. La technologie BeadArray permet de mesurer de manière robuste et précise l’expression de ces gènes.
• Analyse d’échantillons FFPE : Les échantillons fixés dans le formol et incorporés dans la paraffine (FFPE) sont des échantillons tissulaires préservés qui contiennent généralement de l’ARN partiellement dégradé, rendant l’analyse de transcription plus compliquée. Illumina offre des solutions pour garantir des résultats de puces de haute qualité malgré la dégradation de ces ARN.
• Analyse de la méthylation : Les puces épigénétiques vous permettent de parcourir quantitativement les sites de méthylation à travers le génome, en utilisant le multiplexage pour un rendement maximum. La gamme Infinium Methylation Assay d’Illumina couvre les îlots CpG, les régions promotrices des miRNA et d’autres zones importantes dans les régulations épigénétiques.

Ce système repose sur une détection dans l’infrarouge, qui permet une quantification précise sur une gamme de près de 4 log et une augmentation de la sensibilité en raison de l’absence de bruit de fond de la plupart des supports.L’Odyssey est équipé de deux lasers, permettant une détection en multiplexe sur deux longueurs d’ondes (autour de 700 et 800 nm).Des applications immédiates sont la normalisation des résultats sur la même membrane (avec un gène de ménage), ou bien la détection simultanée d’une protéine et de sa forme phosphorylée.

Enfin, outre le western “classique”, l’Odyssey est utilisable pour beaucoup d’autres applications.

En particulier, il est possible de réaliser des expériences d’immunodétection “in-cell” afin de détecter de façon quantitative une protéine sur des cellules fixées, en microplaques de 24 ou 96 puits par exemple. Cela permet d’étudier les voies de signalisation, de faire du screening sans artéfact dû à la lyse cellulaire.

On peut également compter directement les cellules via un marquage des noyaux avec Draq5.

Le système de détection multi-GloMax® Promega peut fonctionner comme un luminomètre (mesure d’activité luciférase) ou un photomètre (dosage protéique) pour plaques 96 puits. Rapidité de lecture, facile d’utilisation. Export des données en format csv.

Le nCounter Analysis System de NanoString, est une manière simple et rentable d’établir le profil de centaines d’ARNm, de microARN, ou d’ADN simultanément, offrant haute sensibilité et précision. La détection numérique de molécules cibles et les hauts niveaux de multiplexage éliminent le choix entre la qualité et la quantité de données. Le système de NanoString utilise des codes barres moléculaires pour détecter et compter des centaines de transcrits uniques dans une réaction seule. Contrairement à d’autres méthodes, le protocole n’inclus pas d’amplification qui pourrait représenter un biais pour les résultats. Le système se divise en deux éléments :

• La nCounter Prep Station : Elle traite les échantillons pour les préparer à la collecte de données sur le nCounter Digital Analyser. Avant de placer les échantillons sur la Prep Station, ceux-ci sont hybridés selon le protocole nCounter. Puis, ils sont purifiés et immobilisés par la suite dans la cartouche pour la collecte de données. La Prep Station peut traiter jusqu’à 48 échantillons dans un laps de temps de 10 heures.
• Le nCounter Digital Analyser : il collecte les données en prenant des photos des reporters fluorescents immobilisés dans la cartouche avec un appareil photo CCD via une lentille de microscope. Les images sont traitées par la machine et les donnnées fournies incluent l’identifiant cible et le nombre de comptage ainsi que le nombre de comptage pour les contrôles internes, ce qui permet à chaque essai d’être quantitatif.

Les analyseurs Seahorse XFe24 mesurent simultanément la respiration mitochondriale (consommation d’oxygène) et la glycolyse (libération d’ion H+) en utilisant des microcapteurs optiques non invasifs. Doté d’une microchambre transitoire, le XFe24 permet de réaliser des mesures précises, non invasive, non destructives sur 24 échantillons simultanément avec l’injection automatique séquentielle de 4 drogues permettant d’étudier spécifiquement différents complexes mitochondriaux. L’un des avantages du XFe24 est qu’il est utilisable non seulement sur des monocouches de cellules primaires adhérentes (différencies ou non), des lignées cellulaires, des cellules non adhérentes, sur des mitochondries isolées mais également sur des îlots isolés de pancréas, permettant une analyse précise de la fonction mitochondriale dans différents contextes tissulaires.

Le nouveau système VIIa 7 est un système de PCR en temps réel de 7e génération qui permet une productivité élevée de qPCR grâce à sa flexibilité, ses spécificités et ses performances.

• 1°) Détermination de la concentration d’une cible nucléique grâce à une courbe de concentration contrôle (courbe de standard). Utilisation de sondes TaqMan spécifiques ou de SYBR Green.
• 2°) Détermination de la concentration relative d’un échantillon ou d’une cible grâce à une courbe de standard et un contrôle endogène. Les mesures de concentrations sont ainsi normalisées en utilisant le contrôle endogène. Utilisation de sondes TaqMan spécifiques. Cette méthode peut-être utilisée pour :
  • comparer l’expression d’un gène au sein de différents tissus.
  • comparer l’expression d’un gène dans un échantillon traité et un autre échantillon non traité.
  • comparer l’expression d’un gène avec l’allèle sauvage par rapport à l’allèle muté.
  • comparer l’expression d’un gène en fonction du temps sous différentes condition de traitements.
• 3°) Détermination du génotype d’un variant génétique (SNP or Insertion /Déletion) soit en temps réel (Real Time PCR) soit en point final à la fin de la réaction de PCR. Utilisation de sondes TaqMan spécifiques.
• 4°) Détermination de la présence ou l’absence de l’expression d’un gène dans un échantillon. Réalisation d’une PCR avec deux sondes TaqMan spécifiques à un contrôle interne et au gène d’intérêt.
• 5°) Détermination de la température de fusion d’une cible nucleïque (TM). Réalisation d’une courbe de fusion par un gradient de température en présence de SYBR Green à l’issue de la PCR. Détermination de la présence ou de l’absence d’amplificats contaminants.

Pour chaque point, l’étude peut se faire soit sur 96 échantillons soit sur 384 échantillons.

TLDA pour TaqMan Low Density Array est un système qui permet de déterminer rapidement par quantification relative le profil d’expression d’un grand nombre de gènes ou de miRNA sur plusieurs échantillons dans un volume de réaction réduit (2 µl : 1 µl d’échantillon et 1 µl de mix réactionnel).
Des sondes TaqMan sont introduites dans une plaque de 384 puits.

Il existe deux types de plaque 384 :

• Celle sur mesure, customisée au sein de laquelle on inclut les sondes TaqMan qui nous intéressent.
• Celle prédéfinie pour un diagnostic scientifique ou médical

La PamStation 12 est un instrument entièrement automatisé conçu pour le traitement des puces PamChip 4. Il est disponible pour l’études phosphotyrosine kinase (PTK) ou des sérine-thréonine kinase (STK). La surface 3D des puces PamChip fournit des caractéristiques uniques pour permettre une analyse en temps réel des acides nucléiques et des protéines de liaison afin de suivre cinétiquement les réactions enzymatiques des kinases.

L’échantillon constitué de protéines et d’anticorps marqués sont distribués sur la PamChip, qui est placé dans la PamStation12. Une fois dans l’instrument l’échantillon est hybridée à une température prédéterminée. Lors de l’hybridation, l’échantillon est pompé à travers le matériau poreux afin d’optimiser la cinétique de liaison et de réduire le temps de l’essai. Les temps de réaction sont typiquement de l’ordre de la minute à une heure.