Services

• Extractions d’ADNs à partir de sang total
  • via kit Macherey Nagel pour des petits volumes de sang (1 – 4ml)
  • via Autopure LS Qiagen : pour de plus grands volumes : 5-10ml ; 10-20ml
• Extractions d’ADNs à partir de salive / kit Oragene
• Extractions d’ADNs à partir de tissus : coupes FFPE ou culots secs

• Extractions d’ARNs à partir de tissus ou de culots secs via kit Macherey Nagel

• GWAS : génotypage haut débit via IScan Illumina
• Analyses de Méthylation via puces EPIC
• Analyses d’expression via technologie NanoString
• Pamstation 12 (Pamgene) : Analyses du kinome (phosphotyrosine kinase (PTK) ou des sérine-thréonine kinase (STK)) via technologie Pamgene

Préparation de librairies CoDE-seq, WES, WGS, RNA seq, ChIP seq :

• CoDE-seq : Analyse WES CNV enrichie – Exclusivité de la plateforme
• WES: KAPA HyperExome (Roche) pour le séquençage d’exome
• WGS : kits DNA PCR-Free Prep, Tagmentation (Illumina) pour le séquençage de génome
• RNA-seq : stranded mRNAseq et total RNA seq, selon projet
• Autres types de librairies selon demande
• Séquençage en ready to load

• Préparation automatisée des librairies : via STARlet (Hamilton), Sciclone (Perkin Elmer) & Bravo (Agilent)
• QC selon protocoles des fournisseurs via Bioanalyzer (Agilent) ou LabChip (Perkin-Elmer)

Nous avons acquis le NovaSeq 6000Dx  en décembre 2022 et le NovaSeq X+ en mai 2023, premiers équipements de ces types installés en France, tout comme précédemment en juin 2017 notre NovaSeq 6000! Nous possédons également un NextSeq500 et un MiSeq.

L’ensemble de nos équipements NGS nous permettent de vous proposer plusieurs débits de séquençage : le très haut débit, le haut débit et le moyen débit, et ainsi nous adapter à vos projets.

Nous sommes certifié pour le séquençage via les équipements Illumina.

L’outil Sequencing analysis viewer (Illumina) permet de visualiser les paramètres qualité de séquençage de nos NovaSeq 6000Dx, NextSeq ou MiSeq en cours de run ou à la fin d’un run.

A 1 : schéma d’une flow cell (ici 4 lanes d’un run NovaSeq6000Dx S4) avec code de couleur reflétant la qualité du séquençage d’une flow cell ; 2 : données par cycle de séquençage, chaque base est représentée par une couleur ; 3 : QScore distribution, permet de visualiser le nombre de reads par score de qualité, seuls les reads passant les filtres qualité sont comptabilisés ; 4 : données par lane, (en nombre de clusters / mm²), 5 : QScore Heatmap : permet de visualiser le QScore par cycles. B visualisation en détail d’une section de flow cell. Différents paramètres de qualité peuvent ainsi être analysés (densité de clusters ayant passé les filtres, taux d’erreur (déterminé par l’alignement avec le PhiX,…)

• Analyses bioinformatiques de données de séquençage haut débit:
  Exome / Génome :
    Nous vous proposons différents niveaux d’analyses :
  • Niveau 1 : Données FastQ et compte rendu.
  • Niveau 2 : Données FastQ, Liste des SNPs  et Indels en référence hg38 avec filtre à 8X sur la profondeur; fichier BAM/CRAM, statistiques, compte rendu.
  • Niveau 3 :
    • Fichiers FastQ et BAM/CRAM
    • Liste des SNPs et Indels en référence hg38 (filtrés à 8X) avec annotations supplémentaires : gène concerné, conséquence (missense, stop lost, etc…), identifiant swissprot, changement d’acide aminé, description du gène, dbSNP hg19 (rs), coordonnées hg19, fréquence Complete Genomics, fréquences 1000 Genomes, fréquences GnomAD, prédictions fonctionnelles pour les codants non-synonymes, MIM disease, pathway, expression, interactions
    • Statistiques, compte rendu
  • Niveau 4 : SUR DEMANDE (ex: étude comparative entre individus, comparaison avec données de génotypage, études de ségrégation…).

• Analyses statistiques :
  Nous vous proposons différentes analyses, pouvant être choisies indépendamment les unes des autres :
  • Données RNA-seq
    • 1 : Analyse d’expression différentielle (normalisation et comparaison de deux ou plusieurs conditions) + annotation des résultats.
    • 2 : Identification de sites d’épissage (alternatif).
  • Données SNP array
    • 1 : Etude d’association pangénomique. Annotation des résultats (gène + littérature).
    • 2 : Imputation des génotypes à partir d’un panel de référence.
    • 3 : Etude d’enrichissement d’un signal d’association dans un ensemble de gènes (voie métaboliques, gènes candidats, liste de gènes différentiellement exprimés, etc.).
    • 4 : Détection d’altérations chromosomiques (duplication, délétion et région d’homozygotie mosaïques, etc.).
  • Données NanoString
    • 1 : Contrôle-qualité des données (données brutes, normalisées et rapport).
    • 2 : Analyse d’expression différentielle.